Научный журнал
Фундаментальные исследования
ISSN 1812-7339
"Перечень" ВАК
ИФ РИНЦ = 1,674

МОРФОЛОГИЯ ЛИМФАТИЧЕСКИХ УЗЛОВ КРЫС ПРИ КОРРЕКЦИИ РАННЕГО ПОСТКОМПРЕССИОННОГО ПЕРИОДА СИНДРОМА ДЛИТЕЛЬНОГО СДАВЛЕНИЯ ПЕРФТОРАНОМ

Шугаева К.Я. 1 Османова А.А. 1 Магомедов М.А. 1 Магомедов Х.М. 1
1 ГБОУ ВПО «Дагестанская государственная медицинская академия»
В эксперименте на 140 белых беспородных крысах обоего пола, массой 180–200 г воспроизведена модель раннего посткомпрессионного периода синдрома длительного сдавления (РПП СДС) с последующей опытной (перфтораном – ПФ) и контрольной (физиологическим раствором) его коррекцией. Установлено, что через 3 суток моделирования РПП СДС в подколенных (ПКЛУ), поясничных (ПЛУ) и брыжеечных (БЛУ) лимфатических узлах развиваются однонаправленного характера, различной интенсивности морфологические изменения структурно-функциональных зон с нарушением клеточного состава. Через 3 суток после реперфузии и коррекции РПП СДС инфузией ПФ обнаружено более выраженное, чем в контроле, восстановление структурно-функциональной организации как регионарных от области компрессии, так и отдаленных от него лимфатических узлов, что свидетельствует о более полной реализации их компенсаторных возможностей и активации процессов бласттрансформации.
синдром длительного сдавления
ранний посткомпрессионный период
коррекция перфтораном
морфология лимфатических узлов
1. Автандилов Г.Г. Медицинская морфометрия. – М.ː Медицина,1990. – 383 с.
2. Ардашева Е.И. Применение перфторана с целью профилактики и лечения компрессионной травмы мягких тканей конечностей (эксперим. иссле-е): – дис. … канд. мед. наук. – Кемерово, 2002.
3. Бородин Ю.И., Сапин М.Р., Этинген Л.Е. Частная анатомия лимфатической системы. – Новосибирск: Изд-во ИК и ЭЛ СО РАМН, 1995. – 362 с.
4. Мусселиус С.Г. Краш-синдром (этиология и патогенез) / С.Г. Мусселиус, А.В. Орлов // Фельдшер и акушерка. – 1990 – № 2 – С. 28–30.
5. Османова А.А. Динамика микроциркуляторного русла фиброзных мембран при компрессионной травме мягких тканей конечностей и коррекции инфузией. (эксперим. исслед.): дис. … канд. мед. наук. – Волгоград, 2010.
6. Lowe K.C. Perfluorochemical oxygen carries and ishaemic tissues // Adv. Exp. Med. Biol. – 1990. – P. 257–266.
7. Michaelson M. Crush injury and crush syndrome // World J. Surg. – 1992. – Vol. 24, № 3. – P. 205–207.
8. Musselius S.G., Putinsev M.D., Enileev R.H. // Adviser Expert System in the Myorenal Syndrome: EDTA Congress, 20-th. – Glasgow, 1993. – P. 78–93.
9. Riess J.G. Fluorocarbon emulsions as injectable oxygen carries // Rev. Fr. Transfus. Haemobiol. France. – 1992 – Vol. 35. – P. 391–404.
10. Riess J.G. Oxygen Carriers («Blood Substitutes») – Raison d’Etre, Chemistru, and Some Physiology // Chem Rev. – 2001. – Vol. 101. – Р. 2797–2919.

Несмотря на большое количество публикаций, посвященных изучению патогенеза, клинической картины и лечения синдрома длительного сдавления (СДС), эти вопросы все еще далеки от окончательного решения. В то же время вероятность стихийных бедствий и катастроф по-прежнему сохраняется на высоком уровне, поэтому проблема изучения СДС не только не потеряла своей актуальности, но и в последнее десятилетие перемещается в число приоритетных, учитывая высокую сейсмическую активность земли, повышение техногенных и автокатастроф [1, 2, 4, 5, 7, 8]. Несмотря на значительные успехи в изучении патогенеза процессов ишемии и реперфузии при СДС, работ, посвященных экспериментальному моделированию СДС, изучению тонких механизмов развития его посткомпрессионного периода и перестройке лимфатического русла, на сегодняшний день немного [2, 3, 5, 8].

Следует отметить особый интерес современных исследователей к поиску новых эффективных способов лечения и профилактики осложнений посткомпрессионного периода СДС. В частности, известно, что использование плазмозаменителя – перфторана, обладающего газотранспортными и полифункциональными свойствами, в коррекции последствий РПП СДС тяжелой степени позволяет улучшить показатели гемодинамики, реологии крови, а также микроциркуляторного русла фиброзных мембран [2, 5, 6, 9, 10].

Цель исследования – провести морфологический анализ лимфатических узлов крыс в раннем посткомпрессионном периоде синдрома длительного сдавления (РПП СДС) на фоне коррекции его инфузией перфторана (ПФ).

Материал и методы исследования

Работа выполнена на материале, полученном от 140 белых беспородных крыс обоего пола, массой 180–200 г, распределенных на 4 экспериментальные группы:

I – интактные животные – (20);

II – РПП СДС без коррекции – (40);

III – модель РПП СДС + коррекция физ. р-ра (контроль) – (40);

IV – модель РПП СДС + коррекция ПФ (опыт) – (40);

Воспроизведение модели РПП СДС тяжелой степени достигалось по известной методике путем сдавления 2-х тазовых конечностей крыс в специальных тисках в течение 8 часов. Эксперименты проводились под кетаминовым наркозом (в/м, из расчета 25 мг/г массы тела). Сразу после декомпрессии животным 3 и 4 группы в течении 3 суток (1 раз в сутки) проводилась внутривенная и лимфотропная инфузия плазмозаменителей. В опытной группе в хвостовую вену крысы вводили 10 % эмульсию ПФ (из расчета 2,0 мг/кг массы тела), одновременно ПФ вводили в количестве 0,2–0,4 мл в межпальцевые промежутки тазовых конечностей. В контрольной (III) группе животным вводили аналогичным способом такое же количество физиологического раствора.

Через 3 суток животные забивались под наркозом путем декапитации. Подколенные (ПКЛУ), поясничные (ПЛУ) и брыжеечные (БЛУ) лимфатические узлы фиксировались в 12 % нейтральном формалине. После парафиновой проводки изготавливали срезы толщиной 5–7 мкм, которые окрашивали гематоксилин-эозином. Морфометрический анализ лимфатических узлов проводили по Г.Г. Автандилову (1990), методом точечного счета с использованием бинокулярного микроскопа «МБС-9» с окулярным микрометром и вмонтированной в окуляр морфометрической сеткой (при ув. 8×7; 10×90). Клеточный состав функциональных зон лимфатических узлов подсчитывался на срезах в 5 полях зрения с последующим перерасчетом на 1 мм2 площади среза в %. Микроскопия и микрофотосъемка препаратов проводились с использованием микроскопа «Wilomed» (Германия), сопряженного через видеокамеру с компьютером, при ув. 10×20; 10×10.

Все количественные данные подвергались статистической обработке, используя пакет прикладных программ «Statistika» фирмы Sfatsoft, (2001), v.6.0. Значимость различия параметрических данных оценивали используя t-критерий Стьюдента. Непараметрические данные обработаны с использованием критерия х2. Критическим считался уровень статистической значимости Р ≤ 0,05. Показатели полученные при введении физ. р-ра или ПФ при СДС, сравнивали с данными СДС без коррекции.

Результаты исследования и их обсуждение

Через 3 суток после декомпрессии без инфузии плазмозаменителей у крыс наблюдается изменение соотношения структурно-функциональных зон ПКЛУ, ПЛУ и БЛУ, по сравнению с таковыми интактной группы. При этом общая площадь лимфатических узлов в среднем уменьшается на 13 % (по сравнению с интактными; Р ≤ 0,05), площадь коркового вещества практически во всех ЛУ уменьшается (максимально в ПКЛУ на 22,8 % (Р ≤ 0,05), по сравнению с интактной группой), а площадь мозгового вещества исследованных ЛУ максимально снижается в БЛУ (на 20 %, по сравнению с интактными; Р ≤ 0,05). Через 3 суток после реперфузии в корковом веществе исследованных ЛУ отмечается незначительный рост количества первичных и вторичных лимфоидных узелков, сопровождающийся существенным увеличением их размеров, по сравнению с интактной группой (табл. 1). Практически во всех исследованных ЛУ на фоне разрыхления, утолщения их капсулы наблюдается расширение краевых и мозговых синусов. Увеличиваются в размерах мозговые тяжи указанных ЛУ, особенно в ПКЛУ (на 2,4 %, по сравнению с интактными; Р ≤ 0,05). Отмечалось наибольшее снижение корково-мозгового индекса в ПКЛУ (на 27,4 %, по сравнению с интактными; Р ≤ 0,05) и индекс Мт/Мс в БЛУ уменьшался на 35 % (по сравнению с интактными) (табл. 1). Состояние цитоархитектоники исследованных ЛУ через 3 суток после реперфузии (без коррекции) представлено в табл. 2. Из таблицы видно, что в герминативных центрах вторичных лимфоидных узелков исследованных ЛУ снижается количество бластных форм средних лимфоцитов, с параллельным ростом малых форм. В ПКЛУ, по сравнению с интактными, средние лимфоциты снижаются в 1,5 раза, в БЛУ – 3 раза, а наибольший рост малых лимфоцитов регистрируется в ПКЛУ. Здесь же существенно возрастает число макрофагов, незначительно увеличивается количество деструктивно измененных клеток. В данной группе эксперимента цитоархитектоника паракортикальной зоны исследованных ЛУ отличалась заметным, по сравнению с интактной группой, ростом числа средних лимфоцитов (в ПКЛУ – 2 раза), увеличением количества макрофагов (в БЛУ – 2 раза).

В мозговых синусах и мозговых тяжах исследованных лимфатических узлов данной группы экспериментов наблюдается увеличение плазматических клеток и макрофагов, по сравнению с интактной группой (табл. 2).

Через 3 суток после декомпрессии и коррекции инфузией физиологического раствора (контроль), во всех исследованных лимфатических узлах обнаружено определенное увеличение площади коркового вещества с дальнейшим снижением мозгового вещества (табл. 1). Одновременно практически во всех ЛУ наблюдается уменьшение числа лимфоидных узелков и их диаметра, размеров краевого синуса с параллельным ростом площади мозговых синусов (табл. 1). Оценка К/М и Мт/Мс индексов через 3 суток после контрольной коррекции РПП СДС показала достоверное снижение К/М (по сравнению с группой без коррекции) практически по всем ЛУ на 4–19 %, (Р ≤ 0,05) с ростом индекса Мт/Мс на 7–60 % (по сравнению с группой без коррекции; Р ≤ 0,05) (табл. 1). Оценка клеточного состава функциональных зон изученных ЛУ показала, что через 3 суток после реперфузии и контрольной коррекции в герминативных центрах вторичных лимфоидных узелков основную массу клеток составляют малые, средние лимфоциты, макрофаги и деструктивно измененные клетки, а мозговые синусы исследованных ЛУ содержат зрелые плазматические клетки, макрофаги и малые лимфоциты. В мозговых тяжах на данном сроке контрольной коррекции РПП СДС наблюдается уменьшение количества плазмоцитов и макрофагов (табл. 3).

Анализ микропрепаратов исследованных ЛУ через 3 суток после реперфузии и инфузии перфторана (опыт) показал определенные особенности их позитивной структурной перестройки, более выраженные, чем в контрольной группе (после инфузии физ. р-ра) с наибольшим приближением показателей к интактным значениям. Так, площадь коркового вещества исследованных ЛУ по сравнению с контролем увеличивается в ПКЛУ на 18 %, в БЛУ на 7 % и в ПЛУ на 0,3 % (Р ≤ 0,05).

Таблица 1

Морфометрическая характеристика относительных размеров структурно-функциональных зон подколенных, поясничных и брыжеечных лимфатических узлов крыс через 3 суток коррекции РПП СДС (М ± m; n = 30; в %; Р ≤ 0,05)

№ п/п

Экспериментальные серии

Интактная группа

Модель РПП (без коррекц.)

Модель + корр. физ. р-м (контроль)

Модель + корр. ПФ (опыт)

Группы лимфатических узлов

Исследованные показатели

ПКЛУ

ПЛУ

БЛУ

ПКЛУ

ПЛУ

БЛУ

ПКЛУ

ПЛУ

БЛУ

ПКЛУ

ПЛУ

БЛУ

1

Капсула ЛУ, толщ. в мкм

3,20 ± 0,16

6,30 ± 0,22

5,0 ± 0,15

5,34 ± 0,36

5,10 ± 0,18

3,90 ± 0,18

4,74 ± 0,28

5,50 ± 0,19

3,30 ± 0,40

3,29 ± 0,24

5,70 ± 0,19

4,80 ± 0,20

2

Корковое вещество, в % к площади среза

52,28 ± 1,86

67,8 ± 1,22

57,50 ± 2,44

40,35 ± 0,07

58,60 ± 1,35

59,90 ± 1,80

44,89 ± 0,89

68,0 ± 0,20

63,40 ± 1,10

53,22 ± 2,20

68,20 ± 0,80

58,80 ± 0,33

3

Мозговое вещество, в % к площади среза

40,53 ± 1,51

22,48 ± 1,20

36,48 ± 2,15

46,29 ± 1,19

20,90 ± 1,40

28,80 ± 0,59

43,2 ± 1,87

19,60 ± 1,10

34,29 ± 1,10

44,28 ± 1,23

23,76 ± 0,55

36,86 ± 0,10

4

Количество лимф. узелков, с центром размножения

3,37 ± 0,31

3,30 ± 1,70

3,69 ± 0,10

6,60 ± 0,60

2,80 ± 0,47

2,70 ± 0,31

5,0 ± 0,90

3,60 ± 0,22

2,70 ± 0,43

3,76 ± 0,12

3,50 ± 0,36

3,60 ± 0,51

5

Количество лимф. узелков, без центров размножения

4,90 ± 0,80

9,20 ± 0,14

5,80 ± 0,47

5,29 ± 0,44

8,90 ± 1,90

3,30 ± 0,80

4,40 ± 0,80

8,70 ± 0,10

2,0 ± 0,41

5,20 ± 0,20

9,30 ± 0,17

5,10 ± 0,20

6

Лимфоидные узелки с

центром размножения

4,20 ± 0,31

8,45 ± 1,60

4,57 ± 1,03

5,96 ± 1,20

7,90 ± 1,10

3,90 ± 0,40

3,80 ± 0,21

7,50 ± 0,30

3,40 ± 0,23

5,25 ± 0,32

8,80 ± 1,0

4,90 ± 0,61

7

Лимфоидные узелки без центров размножения

5,91 ± 0,64

7,0 ± 0,74

6,50 ± 0,41

4,65 ± 0,73

5,50 ± 0,30

3,90 ± 0,30

4,70 ± 0,85

4,10 ± 0,50

3,10 ± 0,51

6,0 ± 0,17

7,70 ± 0,65

5,60 ± 0,20

8

Краевой синус

1,83 ± 0,92

3,85 ± 0,47

2,37 ± 0,13

3,77 ± 0,45

4,80 ± 0,27

3,89 ± 0,17

3,30 ± 0,75

3,10 ± 0,29

3,0 ± 0,49

2,10 ± 0,25

4,40 ± 0,18

3,20 ± 0,24

9

Мозговые синусы

12,55 ± 0,90

7,53 ± 0,26

10,01 ± 0,90

23,79 ± 0,70

8,8 ± 0.47

12,60 ± 0,41

22,70 ± 0,56

8,90 ± 0,20

11,80 ± 0,30

15,10 ± 0,24

7,90 ± 0,22

10,90 ± 0,36

10

Мякотные (мозговые) тяжи

24,57 ± 0,63

13,90 ± 0,47

24,80 ± 0,50

25,14 ± 0,61

14,0 ± 0,88

25,00 ± 0,80

22,50 ± 0,12

12,80 ± 0,29

23,10 ± 0,71

26,0 ± 0,37

15,50 ± 0,86

25,40 ± 0,80

11

К/М – индекс

1,35 ± 0,047

2,90 ± 0,47

1,70 ± 0,37

0,98 ± 0,024

2,70 ± 0,36

1,44 ± 0,62

1,30 ± 0,022

2,29 ± 1,0

1,22 ± 0,56

1,40 ± 0,073

3,10 ± 1,21

1,85 ± 0,27

12

Мт/Мс – индекс

2,0 ± 0,190

2,10 ± 0,30

2,80 ± 0,29

1,80 ± 0,250

1,5 ± 0,19

1,80 ± 0,50

2,10 ± 0,312

1,6 ± 0,15

2,20 ± 0,47

2,10 ± 0,210

2,27 ± 0,60

3,10 ± 0,75

Примечание. К/М индекс – корково-мозговой индекс. Мт/Мс – индекс соотношения мякотных тяжей к мозговым синусам; Р ≤ 0,05 – по сравнению с контролем.

Площадь мозгового вещества исследованных ЛУ, по сравнению с контрольной группой в ПКЛУ больше на 2,5 %, в ПЛУ на 21 %, а в БЛУ на 7,5 % (Р ≤ 0,05) (табл. 1). Количество лимфоидных узелков с центрами размножения, по сравнению с контролем уменьшается в ПКЛУ на 33 %; в ПЛУ и БЛУ на 2,7 % (Р ≤ 0,05). Количество лимфоидных узелков без центров размножения по сравнению с контролем возрастает в БЛУ на 60 %; и в ПКЛУ на 18 % (Р ≤ 0,05). Аналогичным образом обнаруживается и превосходство площади указанных лимфоидных узелков при сравнении их с контрольной группой эксперимента. После реперфузии и коррекции ПФ отмечается значительное, по сравнению с контролем, уменьшение площади краевого, корковых, промежуточных и мозговых синусов практически во всех исследованных объектах. Необходимо отметить, что через 3 суток после реперфузии и коррекции ПФ показатели К/М и Мт/Мс индексов исследованных ЛУ достигают значений, наиболее близких в интактной группе наблюдения (табл. 1). На данном сроке коррекции СДС ПФ возрастает толщина капсулы исследованных ЛУ, которая максимально (по сравнению с контролем) приближается к интактным показателям, по нормализации которой, по-видимому, можно косвенно судить о степени восстановления их размеров.

Таблица 2

Клеточный состав структурно-функциональных зон подколенных, поясничных и брыжеечных лимфатических узлов крыс через 3 суток после воспроизведения РПП СДС (М ± m; n = 30; в %; Р ≤ 0,05)

№ п/п

Экспериментальные серии

Интактная группа

Модель без коррекции

Группы

исследов. лимфатических

узлов

Исследованные

показатели

ПКЛУ

ПЛУ

БЛУ

ПКЛУ

ПЛУ

БЛУ

1. Герминативный центр вторичных лимфоидных узелков

1

Большие лимфоциты

4,76 ± 0,83

5,30 ± 0,29

2,70 ± 0,29

2,70 ± 0,29

2,50 ± 0,20

2,43 ± 0,50

2

Средние лимфоциты

9,26 ± 1,13

11,27 ± 0,30

5,76 ± 1,06

5,76 ± 1,06

3,10 ± 0,44

2,20 ± 0,10

3

Малые лимфоциты

24,68 ± 2,08

25,27 ± 0,23

26,91 ± 2,04

26,91 ± 2,04

20,10 ± 1,0

20,0 ± 0,18

4

Макрофаги

3,53 ± 0,42

0,80 ± 0,39

4,59 ± 0,35

4,59 ± 0,35

1,20 ± 0,33

2,0 ± 0,40

5

Ретикулярные клетки

1,85 ± 0,08

2,10 ± 0.24

0,83 ± 0,05

0,83 ± 0,05

1,80 ± 0,05

0,80 ± 0,15

6

Деструктивно измененные клетки

0,12 ± 0,05

0,7 ± 0,22

10,39 ± 0,10

10,39 ± 0,10

9,80 ± 0,11

8,3 ± 0,33

2. Паракортикальная зона

1

Большие лимфоциты

0,56 ± 0,13

0,30 ± 0,29

0,35 ± 0,19

0,20 ± 0,10

0,80 ± 0,19

0,39 ± 0,10

2

Средние лимфоциты

0,26 ± 0,012

2,70 ± 0,33

0,86 ± 0,06

2,10 ± 0,11

2,40 ± 0,10

0,70 ± 0,012

3

Малые лимфоциты

62,0 ± 0,59

37,60 ± 1,15

55,4 ± 0,42

19,20 ± 1,70

56,80 ± 0,80

56,3 ± 0,50

4

Макрофаги

5,30 ± 0,45

1,90 ± 0,26

7,90 ± 0,25

2,80 ± 1,0

2,4 ± 0,39

7,88 ± 0,41

5

Ретикулярные клетки

0,85 ± 0,03

2,70 ± 0,32

0,85 ± 0,04

2,0 ± 0,24

0,86 ± 0,27

0,93 ± 0,07

6

Деструктивно измененные клетки

0,20 ± 0,10

0,36 ± 0,10

14,50 ± 0,23

7,90 ± 2,09

2,89 ± 0,74

8,40 ± 0,92

3. Мозговые синусы

1

Большие лимфоциты

0,37 ± 0,20

0,80 ± 0,19

1,40 ± 0,27

1,40 ± 0,27

0,47 ± 0,22

0,85 ± 0,44

2

Средние лимфоциты

2,53 ± 0,27

1,80 ± 0,11

2,03 ± 0,21

2,03 ± 0,21

2,50 ± 0,43

2,0 ± 0,10

3

Малые лимфоциты

21,96 ± 1,29

16,10 ± 0,59

18,10 ± 1,34

18,10 ± 1,34

7,40 ± 1,77

8,80 ± 0,34

4

Макрофаги

20,20 ± 1,76

4,90 ± 0,62

22,75 ± 2,09

22,75 ± 2,09

5,80 ± 1,10

18,90 ± 0,24

5

Ретикулярные клетки

44,16 ± 1,50

26,10 ± 0,24

51,66 ± 1,50

51,66 ± 1,50

29,90 ± 1,0

48,20 ± 1,62

6

Деструктивно измененные клетки

0,47 ± 0,10

0,21 ± 0,20

2,20 ± 0,51

2,20 ± 0,51

2,80 ± 0,92

2,69 ± 0,21

4. Мозговые тяжи

1

Зрелые плазматические клетки

55,50 ± 1,44

13,10 ± 0,85

61,70 ± 2,33

61,70 ± 2,33

19,30 ± 1,10

52,60 ± 0,93

2

Макрофаги

0,60 ± 0,80

0,40 ± 0,96

15,40 ± 0,90

15,40 ± 0,90

18,80 ± 0,57

1,0 ± 0,04

Примечание. Р ≤ 0,05 – по сравнению с контролем.

Анализ цитоархитектоники функциональных зон исследованных ЛУ через 3 суток после реперфузии и коррекции ПФ показал, что их герминативные центры в основном представлены средними, малыми лимфоцитами, макрофагами и деструктивными клетками (табл. 3), которые по сравнению с аналогичным контролем достоверно возрастают в 1,5–2 раза, максимально приближаясь к интактным значениям. Паракортикальная зона исследованных ЛУ на данном этапе опытной коррекции представлена возрастающим (по сравнению с контролем) числом малых лимфоцитов, макрофагов и ретикулярных клеток. При этом количество деструктивно измененных клеток в ней существенно уменьшается. В мозговых синусах исследованных ЛУ через 3 суток после коррекции СДС ПФ наблюдается превосходящий в контроле рост лимфоцитов и макрофагов, а также снижение числа плазмоцитов, деструктивно измененных клеток. Мозговые тяжи исследованных ЛУ в основном содержат плазматические клетки и макрофаги, число которых (при сравнении с контролем) наиболее близко к таковым в интактной группе наблюдения (табл. 3).

Таблица 3

Клеточный состав структурно-функциональных зон подколенных, поясничных и брыжеечных лимфатических узлов крыс через 3 суток после коррекции РПП СДС (М ± m; n = 30; в %; Р ≤ ,05)

№ п/п

Экспериментальные серии

Модель + коррекция физ. раствором (контроль)

Модель + коррекция ПФ (опыт)

Группы

исследов.

лимфатических

узлов

Исследованные

показатели

ПКЛУ

ПЛУ

БЛУ

ПКЛУ

ПЛУ

БЛУ

1. Герминативный центр вторичных лимфоидных узелков

1

Большие лимфоциты

2,85 ± 0,27

2,69 ± 0,20

3,60 ± 0,40

4,33 ± 0,56

5,80 ± 0,11

3,90 ± 0,25

2

Средние лимфоциты

8,71 ± 0,32

7,62 ± 0,43

5,90 ± 0,30

10,20 ± 0,69

12,80 ± 0,80

5,83 ± 0,40

3

Малые лимфоциты

27,10 ± 2,0

22,73 ± 1,10

22,50 ± 0,11

35,40 ± 0,21

27,70 ± 1,20

26,50 ± 0,50

4

Макрофаги

4,96 ± 0,40

1,50 ± 0,10

2,0 ± 0,16

6,41 ± 0,32

2,89 ± 0,64

2,80 ± 0,44

5

Ретикулярные клетки

0,93 ± 0,03

1,90 ± 0,70

1,90 ± 0,20

1,68 ± 0,09

2,70 ± 0,10

1,96 ± 0,16

6

Деструктивно измененные клетки

6,64 ± 0,18

4,10 ± 0,10

7,0 ± 0,92

3,21 ± 0,05

1,80 ± 0,21

3,80 ± 0,36

2. Паракортикальная зона

1

Большие лимфоциты

0,39 ± 0,10

0,40 ± 0,31

0,89 ± 0,90

0,69 ± 0,50

0,56 ± 0,80

2,0 ± 0,44

2

Средние лимфоциты

0,70 ± 0,012

2,50 ± 0,17

1,24 ± 0,12

0,80 ± 0,035

3,40 ± 0,18

2,40 ± 0,27

3

Малые лимфоциты

56,3 ± 0,50

27,0 ± 1,40

53,30 ± 0,71

59,7 ± 0,61

39,40 ± 1,77

60,30 ± 0,30

4

Макрофаги

7,88 ± 0,41

3,0 ± 1,70

2,30 ± 0,56

8,85 ± 0,67

4,10 ± 0,96

2,90 ± 0,10

5

Ретикулярные клетки

0,93 ± 0,07

1,80 ± 0,45

0,80 ± 0,28

1,0 ± 0,02

3,0 ± 0,31

0,97 ± 0,18

6

Деструктивно измененные клетки

8,40 ± 0,92

7,85 ± 1,10

1,50 ± 0,76

2,0 ± 0,47

2,28 ± 1,56

0,30 ± 0,36

3. Мозговые синусы

1

Большие лимфоциты

0,90 ± 0,37

0,53 ± 0,11

0,80 ± 0,61

0,52 ± 0,10

0,96 ± 0,10

0,29 ± 0,23

2

Средние лимфоциты

2,94 ± 0,14

3,40 ± 0,81

2,69 ± 0,10

2,50 ± 0,26

3,30 ± 0,90

1,80 ± 0,37

3

Малые лимфоциты

22,10 ± 1,33

11,20 ± 2,66

12,55 ± 0,27

23,46 ± 1,25

18,80 ± 2,10

17,30 ± 0,47

4

Макрофаги

22,03 ± 1,20

5,0 ± 1,0

20,10 ± 0,23

23,51 ± 1,15

6,60 ± 1,81

22,40 ± 0,50

5

Ретикулярные клетки

48,10 ± 1,23

28,80 ± 1,90

46,20 ± 0,90

50,11 ± 1,50

26,20 ± 1,10

37,10 ± 0,20

6

Деструктивно измененные клетки

0,90 ± 0,28

2,60 ± 0,67

1,90 ± 0,28

0,42 ± 0,17

0,60 ± 0,65

1,0 ± 0,18

4. Мозговые тяжи

1

Зрелые плазматические клетки

59,44 ± 1,10

14,61 ± 1,22

45,0 ± 0,14

50,63 ± 0,36

19,50 ± 1,0

42,30 ± 0,23

2

Макрофаги

10,59 ± 0,61

10,0 ± 0,20

0,86 ± 0,02

15,36 ± 0,75

15,80 ± 0,59

2,80 ± 0,03

Примечание. Р ≤ 0,05 – по сравнению с контролем.

Таким образом, вышеизложенное позволяет сделать выводы:

– При экспериментальном моделировании РПП СДС тяжелой степени без коррекции через 3 суток в ПКЛУ, ПЛУ и БЛУ развиваются однонаправленного характера, различной степени интенсивности морфологические изменения их структурно-функциональных зон с нарушением клеточного состава. Наиболее выраженные изменения наблюдаются в ПКЛУ и ПЛУ.

– Через 3 суток после реперфузии и контрольной коррекции РПП СДС инфузией физиологического раствора сохраняется значительное расширение краевых и мозговых синусов, истончение капсулы исследованных ЛУ, а в функциональных зонах большое количество деструктивно измененных клеток, что позволяет судить о малой эффективности проводимой инфузионной терапии.

– Через 3 суток после реперфузии и опытной коррекции РПП СДС инфузией перфторана происходит более выраженное, чем в контроле, восстановление структурно-функциональной организации как регионарных от области компрессии, так и отдаленных от него ЛУ с значительным увеличением средних, малых лимфоцитов, макрофагов и снижением числа деструктивно измененных клеток. Из этого следует, что инфузия ПФ в РПП СДС способствует более полной реализации компенсаторно-приспособительных возможностей и активации процессов бласттрансформации в исследованных ЛУ.

Рецензенты:

Бакуев М.М., д.м.н., профессор, заведующий кафедрой гистологии, ГБОУ ВПО «Дагестанская государственная медицинская академия» Минздрава России, г. Махачкала;

Ахмадудинов М.Г., д.м.н., профессор, заведующий кафедрой оперативной хирургии и топографической анатомии, ГБОУ ВПО «Дагестанская государственная медицинская академия» Минздрава России, г. Махачкала.

Работа поступила в редакцию 23.07.2014.


Библиографическая ссылка

Шугаева К.Я., Османова А.А., Магомедов М.А., Магомедов Х.М. МОРФОЛОГИЯ ЛИМФАТИЧЕСКИХ УЗЛОВ КРЫС ПРИ КОРРЕКЦИИ РАННЕГО ПОСТКОМПРЕССИОННОГО ПЕРИОДА СИНДРОМА ДЛИТЕЛЬНОГО СДАВЛЕНИЯ ПЕРФТОРАНОМ // Фундаментальные исследования. – 2014. – № 7-5. – С. 1054-1059;
URL: https://fundamental-research.ru/ru/article/view?id=34828 (дата обращения: 28.03.2024).

Предлагаем вашему вниманию журналы, издающиеся в издательстве «Академия Естествознания»
(Высокий импакт-фактор РИНЦ, тематика журналов охватывает все научные направления)

«Фундаментальные исследования» список ВАК ИФ РИНЦ = 1,674