Большое внимание в птицеводстве уделяется дебикированию птиц. Правильно проведенное дебикирование имеет преимущества: улучшается состояние оперения, сводится к минимуму потеря пера, благодаря чему птица меньше расходует тепловой энергии, становится более спокойной, не травмирует друг друга, снижается смертность [1, 3, 5]. При этом важно учитывать влияние дебикирования на состояние микробиоценоза органов дыхания птицы.
В этой связи имеется тенденция к использованию препаратов, изготовленных из природного сырья, многие из которых обладают разносторонней биологической активностью, способностью стимулировать иммунитет, восстанавливать естественный микробиоценоз, снимать физиологическое напряжение на организм, в то же время безвредны для организма. К таким средствам относится продукт пчеловодства прополис и пробиотики, которые содержит в своем составе большое количество биологически активных компонентов [2, 4].
В этой связи целью исследований явилось изучение влияния дебикирования на состояние микробиоценоза полости клюва, трахеи, бронхов, легких птиц и выявить возможности его ускоренного восстановления с применением в составе основного рациона птиц на фоне дебикирования биологически активного продукта пчеловодства (БАПП) – прополиса и пробиотика «Биокорм Пионер».
Материалы и методы исследований
Исследования проводились в лабораториях кафедр микробиологии и иммунологии РГАУ – МСХА имени К.А. Тимирязева. Экспериментальная часть работ проводилась в условиях птицефабрики «Туймазинская» республики Башкортостан. Исследования проводились на птицах породы Хайсекс белый, которые были разделены на пять групп. Птицы 1 группы были контрольные – не подвергнутые дебикированию, 2 группы – дебикированные, они находились на одинаковых условиях с птицами контрольной группы. В рацион птиц 3 группы на фоне дебикирования вносили пробиотик «Биокорм Пионер», 4 группы – прополис в виде прополисного молочка, 5 группы ‒ пробиотик «Биокорм Пионер» + прополис. Убой птиц для взятия материала проводили до начала опытов (фон), а затем через 7, 14, 21, 28 и 35 дней от начала дебикирования. Проведение микробиологических исследований проводили классическими методами с использованием общепринятых питательных сред для исследованных групп микроорганизмов.
Результаты исследования и их обсуждение
Фоновое значение содержания микрококков в полости клюва птиц контрольной и опытных групп находилось в пределах от 28,6 до 31,2 КОЕ/г. Данный показатель у кур контрольной группы повышался в возрастном аспекте и достиг к концу эксперимента (35 дней) 59,9 КОЕ/г. Дебикирование (2 группа) вначале опыта вызывало активное увеличение количества микрококков в полости клюва. К 7 и 14 дням исследований его содержание превысило фоновый уровень в 2,38 и 2,25 раза. В последующие сроки опыта отмечалось умеренное снижение описываемого показателя, и к концу эксперимента уровень микрококков в полости клюва птиц 2 группы был ниже, чем в контроле, в 1,34 раза. Внесение в состав рациона птиц прополиса и пробиотика способствовало более активному снижению уровня микрококков в полости клюва. Минимальное содержание микрококков – 33,2 КОЕ/г ‒ наблюдалось при комплексном применении пробиотика «Биокорм Пионер» и прополиса. И к концу эксперимента описываемый показатель в полости клюва птиц 2, 3, 4 и 5-й опытных групп был ниже, чем в контрольной группе, в 1,34; 1,49; 1,71; 1,8 раза (на 15,3; 19,9; 24,9 и 26,7 КОЕ/г).
Подобным образом изменялась в полости клюва кур динамика эшерихий. Фоновое значение этого показателя в контрольной и опытных группах колебалось в пределах от 26,0 до 27,8 КОЕ/г. В контрольной группе уровень эшерихий повышался в течение всего периода исследований и в конце опыта составил 69 КОЕ/г. Во 2, 3, 4 и 5 опытных группах данный показатель к 7 дню опыта резко увеличился, а в последующие сроки эксперимента имел тенденцию к снижению, уступая к 35 дню контрольной цифре соответственно в 2,02; 2,27; 2,46; 2,82 раза (на 35,0; 38,7; 41,0 и 44,6 КОЕ/г).
Фоновое содержание Staphylococcus aureus в полости клюва кур контрольной и опытных групп выделялось в пределах от 19,6 до 21,7 КОЕ/г. При этом значение данного показателя у птиц контрольной группы увеличивалось в динамике до конца эксперимента, а показатели кур 2, 3 , 4 и 5 групп после дебикирования до 14 дня опыта имели тенденцию к резкому повышению, а в последующие сроки опыта – к постепенному снижению в сторону физиологических норм. Данный процесс имел неодинаковую степень выраженности и проявления в зависимости от проведенных нами манипуляций. Минимальное содержание Staphylococcus aureus к концу опыта в полости клюва птиц 5 группы было – 21,7 КОЕ/г. К этому периоду исследований уровень Staphylococcus aureus по 2, 3, 4 и 5 группам был ниже, чем в контроле 1,98; 3,11; 3,03; 3,39 раза (на 36,6; 50,0; 49,3 и 51,9 КОЕ/г).
Первоначальный фоновый уровень Staphylococcus saprophyticus в полости клюва птиц контрольной и опытных групп не имел существенных колебаний и выделялся в пределах от 31,0 до 32,8 КОЕ/г. Значение данного показателя в полости клюва кур контрольной группы в процессе эксперимента снижалось и к концу опыта было минимальным, составив 13,4 КОЕ/г. В опытных группах отмечалась следующая тенденция – к 7-му дню опытов содержание Staphylococcus saprophyticus значительно понизилось, а в последующие сроки опыта имело тенденцию к повышению. Максимальное содержание сапрофитного стафилококка регистрировалось в полости клюва кур 5 группы, которое достигло к 35 дню 43,3 КОЕ/г. При этом показатели содержания Staphylococcus saprophyticus в полости клюва птиц 2, 3, 4 и 5 групп на данный срок эксперимента были выше, чем в контроле, в 2,0; 2,42; 2,8 и 3,23 раза (на 13,4; 19,1; 24,2 и 30 КОЕ/г).
Подобно динамике Staphylococcus saprophyticus в полости клюва птиц на фоне дебикирования изменялась динамика содержания негемолитического стрептококка. Фоновое значение негемолитического стрептококка выявлялось на уровне от 36,2 до 38,4 КОЕ/г. Содержание негемолитического стрептококка в контрольной группе неуклонно падало и к концу опыта достигло минимального значения, составив 13,4 КОЕ/г. В опытных группах данный показатель после проведения манипуляции по дебикированию выраженно снижался, а в последующем, на фоне проведения прополисотерапии и пробиотикотерапии и особенно их комплексного применения – увеличивался. Максимальное значение уровня негемолитического стрептококка регистрировалось в полости клюва птиц 5 группы. Здесь описываемый показатель к 35 дню достиг 54,6 КОЕ/г. К этому периоду эксперимента уровень негемолитического стрептококка был выше контрольной цифры по 2, 3, 4 и 5 опытным группам в 2,41; 2,77; 3,41 и 4,07 раза (на 18,9; 23,8; 32,4 и 41,2 КОЕ/г).
В полости клюва птиц до начала дебикирования содержание β-гемолитического стрептококка колебалось на уровне от 7,6 до 8,2 КОЕ/г. У кур контрольной группы содержание β-гемолитического стрептококка равномерно повышалось и к концу опытов достигло 48,7 КОЕ/г. У птиц опытных групп, в начале эксперимента, сразу после дебикирования, данный показатель повышался, а в последующие сроки исследований имел тенденцию к активному снижению, составив по 2, 3, 4 и 5 группам 10,0; 7,9; 6,0; 3,88 КОЕ/г.
Дебикирование оказывало существенное влияние на состояние микробиоценоза трахеи кур.
Фоновое значение уровня микрококков в трахее птиц выявлялось на уровне от 15,9 до 17,4 КОЕ/г. Показатель содержания микрококков в трахее кур контрольной группы в процессе эксперимента увеличивался, превысив фоновый уровень к 7, 14, 21, 28 и 35 дням исследований соответственно в 1,14; 1,37; 1,81; 2,11 и 2,49 раза (на 2,4; 6,1; 13,3; 18,2 и 24,4 КОЕ/г). Дебикирование вызывало кратковременное, но выраженное повышение активности микрококков в трахее. Однако с 14 дня эксперимента во всех опытных группах регистрировалось снижение количества микрококков. К концу опытов (35 день) уровень микрококков в трахее кур 2, 3, 4 и 5 групп был ниже, чем в контроле, в 2,07; 2,49; 3,13 и 6,07 раза (на 21,1; 24,4; 27,7 и 34 КОЕ/г).
Содержание эшерихий в трахее птиц контрольной и опытных групп в начале экспериментов выделялось в пределах от 3,2 до 4,1 КОЕ/г. Так же как и показатель микрококков уровень эшерихий в трахее птиц опытных групп, после дебикирования, в начальные сроки опыта, повышался. Процесс нарастания активности эшерихий на фоне дебикирования по 2 группе продолжался до 14 дня эксперимента. К этому сроку они достигли значения 39,6 КОЕ/г. Повышение числа эшерихий в трахее птиц 3, 4 и 5 групп продолжалось на фоне дебикирования до 7 дня эксперимента. На этот срок опыта они составили 19,7; 17,2; 14,0 и 12,2 КОЕ/г. В последующие сроки исследований (14; 21; 28 и 35 дни) регистрировалось постепенное снижение уровня эшерихий в трахее птиц опытных групп. К концу опыта описываемый показатель в трахее кур 2, 3, 4 и 5 групп был ниже, чем у птиц 1 контрольной группы, в 2,47; 4,53; 8,78; 12,9 раза (на 24,6; 32,2; 36,6 и 38,1 КОЕ/г).
Фоновый показатель содержания Staphylococcus aureus в трахее птиц контрольной и опытных групп выделялся в пределах от 11,3 до 12,7 КОЕ/г. Содержание Staphylococcus aureus в трахее птиц в контрольной группе равномерно повышалось и к концу опыта достигло максимума – 52,6 КОЕ/г. В опытных группах данный показатель вначале опыта после дебикирования повышался, а затем активно снижался. В конце эксперимента (35 день) уровень Staphylococcus aureus в трахее птиц 2, 3, 4, 5 опытных групп был ниже контрольной цифры в 1,93; 3,95; 5,15; 7,62 раза (на 25,4; 39,3; 42,445,7 КОЕ/г).
Содержание Staphylococcus saprophyticus в трахее птиц контрольной и опытных групп не превышало значений от 28,3 до 29,6 КОЕ/г. В процессе опытов в трахее кур контрольной группы уровень Staphylococcus saprophyticus снижался, уступая фоновому значению к 7, 14, 21, 28 и 35 дням эксперимента в 1,28; 1,45; 2,43; 4,56; 6,58 раза (на 6,3; 8,9; 16,7; 22,1 и 24,0 КОЕ/г). Уровень сапрофитного стафилококка в трахее птиц 2, 3, 4 и 5 опытных групп после дебикирования вначале резко снижался с последующим повышением в сторону физиологических норм. Этот процесс нарастал по ходу опыта, и к концу эксперимента (35 день) содержание Staphylococcus saprophyticus в трахее птиц 2, 3, 4 и 5 опытных групп было выше, чем у кур контрольной группы в 5,04; 5,67; 6,04 и 6,79 раз (на 17,4; 20,1; 21,7 и 24,9 КОЕ/г).
Первоначальное значение содержания в трахее птиц контрольной и опытной групп негемолитического стрептококка колебалось в пределах от 17 до 18,3 КОЕ/г. Данный показатель в трахее кур изменялся подобно динамике сапрофитного стафилококка. В трахее птиц контрольной группы его значение к 7, 14, 21, 28 и 35 дням опыта снизилось по сравнению с фоновым уровнем в 1,07; 1,5; 1,77; 2,61 и 3,58 раза (на 1,3; 6,1; 8,0; 11,3; 13,2 КОЕ/г). Уровень негемолитического стрептококка в трахее кур 2, 3, 4 и 5 опытных групп к 7 дню от начала дебикирования снизился и уступал контрольной цифре в 2,5; 2,36; 2,42 и 2,46 раза (на 10,2; 9,8; 10,0; 10,1 КОЕ/г). Однако в последующие сроки по всем опытным группам регистрировалось повышение в трахее содержания негемолитического стрептококка. Этот процесс имел разную степень проявления и выраженности по группам. К концу опыта (35 день) уровень негемолитического стрептококка в трахее птиц 2, 3, 4 и 5 опытных групп был выше его значения в контроле в 2,21; 3,2; 3,64 и 4,45 (на 6,2; 11,3; 13,5 и 17,6 КОЕ/г).
В трахее птиц контрольной и опытных групп до начала эксперимента выделялся β-гемолитический стрептококк. Его содержание колебалось на уровне от 3,8 до 4,4 КОЕ/г. В трахее птиц контрольной группы содержание β-гемолитического стрептококка активно повышалось и к концу опытов (35 день) достигло 24,3 КОЕ/г. У птиц опытных групп данный показатель к 7 дню исследования резко увеличился, а в последующие сроки эксперимента имел тенденцию к снижению. На 35 день исследований показатели уровня β-гемолитического стрептококка по 2, 3, 4 и 5 опытным группам были ниже контрольной цифры соответственно в 2,73; 4,05; 4,67 и 6,23 раза (на15,4; 18,3; 19,1 и 20,4 КОЕ/г).
В легких птиц из исследованных выше видов микробов выделялись микрококки, эшерихии, негемолитические и β-гемолитические стрептококки.
Фоновое значение микрококов в легких находилось в пределах от 6,8 до 7,3 КОЕ/г. В легких птиц контрольной группы регистрировалось повышение уровня микрококков и концу исследования достигли значения 16,9 КОЕ/г. Содержание микрококков в легких кур 2, 3, 4 и 5 опытных групп до 7 дня эксперимента повышалось и превысило на этот срок исследований контрольный уровень в 1,22; 1,18; 1,2 и 1,05 раза (на 1,7; 1,4; 0,8 и 0,4 КОЕ/г). В последующие сроки опыта уровень микрококков в легких птиц опытных групп имел тенденцию к достоверному снижению и к концу опыта (35 день) был ниже его значения у кур контрольной группы в 4,56; 6,5; 8,45; 10,5 раза (на 13,2; 14,3; 14,9 и 15,3 КОЕ/г).
Фоновый уровень эшерихий в легких птиц контрольной и опытных групп находился в пределах от 1,8 до 2,1 КОЕ/г. Динамика эшерихий в легких птиц контрольной и опытных групп изменялась подобно динамике в легких микрококков. К концу опыта в легких птиц контрольной группы уровень эшерихий достиг 6,5 КОЕ/г, тогда как в опытных группах, наоборот, данный показатель уменьшался и к 35 дню по 2, 3 и 4 группам был ниже показателя животных контрольной группы в 2,4; 2,82; 6,5 раза (на 3,8; 4,2 и 6,5 КОЕ/г). В легких птиц 5 группы к концу опыта эшерихии отсутствовали.
Содержание негемолитического стрептококка в легких птиц контрольной и опытных птиц в начале опыта выделялось в пределах от 3,2 до 3,6 КОЕ/г. Описываемый показатель в легких кур контрольной группы в процессе опыта повышался и к 35 дню достиг 8,9 КОЕ/г. Уровень негемолитического стрептококка в легких птиц опытных групп до 7 дня исследований повышался, превысив контрольный показатель по 2 группе в 2,2 раза (на 5,8 КОЕ/г, по 3 группе – в 1,7 раза (на 3,4 КОЕ/г), по 4 группе – в 1,54 раза (на 2,6 КОЕ/г, по 5 группе – в1,43 раза (на 2,1 КОЕ/г). В последующие сроки эксперимента содержание негемолитического стрептококка в легких птиц опытных групп снижалось. К концу опытов его значение по 2, 3 и 4 группам было ниже, чем у птиц контрольной группы, в 1,93; 2,96 и 7,41 раза (на 4,3; 5,9 и 7,7 КОЕ/г). По 5 группе к 28 и 35 дням опыта негемолитические стрептококки из легких не выделялись.
До начала опытов из легких птиц контрольной и опытных групп β-гемолитический стрептококк выделялся на уровне от 2,0 до 2,3 КОЕ/г. В ходе исследования регистрировались изменения содержания в легких птиц β-гемолитического стрептококка. В легких кур контрольной группы показатель β-гемолитического стрептококка умеренно и равномерно увеличивался в течение всего периода исследования и к концу эксперимента достиг 7,3 КОЕ/г. Во 2, 3, 4 и 5 опытных группах уровень β-гемолитического стрептококка к 7 дню от начала дебикирования значительно повысился, составив 4,8; 4,5; 4,2 и 4,0 КОЕ/г (при контроле 2,9 КОЕ/г). В последующие сроки опыта значение описываемого показателя в легких птиц опытных групп имело тенденцию к снижению. В конце эксперимента уровень β-гемолитического стрептококка в легких птиц 2, 3, 4 и 5 групп был ниже, чем в контроле, в 2,8; 3,04; 3,65 и 4,86 раза (на 4,7; 4,9; 5,3 и 5,8 КОЕ/г).
Выводы
1. Дебикирование на первой стадии, способствует резкому нарушению естественного микробиоценоза органов дыхания (полости клюва, трахеи, бронхов, легких) птиц, проявляющегося активизацией условно-патогенной микрофлоры (микрококков, золотистого стафилококка, эшерихий и гемолитического стрептококка) и затормаживанием роста резидентной формы микробов (сапрофитного стафилококка, негемолитического стрептококка). В последующем отмечается постепенное восстановление баланса между этими формами микроорганизмов при продолжении нарушения его у недебикированных птиц.
2. Внесение в состав рациона птиц на фоне дебикирования прополиса, пробиотика «Биокорм Пионер» и особенно их композиционных форм способствует значительному затормаживанию размножения условно-патогенной микрофлоры и повышению активности резидентной нормофлоры в органах дыхания птиц.
Рецензенты:
Емцев В.Т., д.б.н., профессор кафедры микробиологии и иммунологии, факультет почвоведения, агрохимии и экологии, ФГБОУ ВПО «Российский государственный аграрный университет – МСХА имени К.А. Тимирязева», г. Москва;
Храмцов В.В., д.с.-х.н., профессор кафедры зоогигиены, акушерства и ветеринарии, зооинженерный факультет, ФГБОУ ВПО «Российский государственный аграрный университет – МСХА имени К.А. Тимирязева», г. Москва.
Работа поступила в редакцию 08.11.2013.Библиографическая ссылка
Маннапова Р.Т., Ахметова А.А. ВЛИЯНИЕ ДЕБИКИРОВАНИЯ ПТИЦ НА СОСТОЯНИЕ ЕСТЕСТВЕННОГО МИКРОБИОЦЕНОЗА ДЫХАТЕЛЬНЫХ ПУТЕЙ И ВОЗМОЖНОСТИ ЕГО КОРРЕКЦИИ // Фундаментальные исследования. – 2013. – № 10-12. – С. 2685-2689;URL: https://fundamental-research.ru/ru/article/view?id=32852 (дата обращения: 19.04.2024).